MC1000 8通道藻類(lèi)在線(xiàn)監測系統由8個(gè)100ml藻類(lèi)培養試管、水浴控溫系統、LEDs光源控制系統及光密度和溶解氧（選配）在線(xiàn)監測系統等組成，可用于藻類(lèi)培養與控制實(shí)驗、梯度對比實(shí)驗等，適于水體生態(tài)毒理學(xué)研究檢測、藻類(lèi)生理生態(tài)研究、水生態(tài)研究等，MC1000 8通道藻類(lèi)在線(xiàn)監測系統主要功能特點(diǎn)如下：

• 8通道藻類(lèi)培養，每個(gè)藻類(lèi)培養試管可培養85ml藻液

• LEDs光源，可對每個(gè)培養試管獨立調節控制和設置光強度和時(shí)間，如晝夜變化等

• 光密度在線(xiàn)監測，包括OD680、OD720，監測數據自動(dòng)存儲

• 溶解氧在線(xiàn)監測（備選）以測量分析藻類(lèi)光合作用等

• 溫度、光照控制可用戶(hù)設置不同的程序模式

• 氣泡混勻：可通過(guò)調節閥手動(dòng)調節氣流量以對培養試管內的藻類(lèi)進(jìn)行混勻

• 可選配O₂/CO₂監測系統，在線(xiàn)監測藻類(lèi)光合放氧和CO₂吸收

• 可選配藻類(lèi)熒光測量模塊

應用領(lǐng)域：

l 多通道同步藻類(lèi)培養

l 同步梯度脅迫實(shí)驗

l 培養條件優(yōu)化

l 控制培養條件與藻類(lèi)生長(cháng)動(dòng)力學(xué)監測

儀器型號：

MC 1000-OD： 8個(gè)通道光源顏色相同，標配冷白光LED

MC 1000-OD-WW：8個(gè)通道光源顏色相同，標配暖白光LED

MC 1000-OD-MULTI： 8個(gè)通道光源顏色不同，分別為1）紫光405nm，2）藍紫光450nm，3）藍光470nm或冷白光，4）暖白光，5）綠光540nm，6）黃橙光590nm，7）紅光640nm，8）遠紅光730nm。

MC 1000-OD-MIX：每個(gè)通道可配備多8種不同顏色的LED光源，光源顏色可由用戶(hù)定制，可選顏色為1）紫光405nm，2）藍紫光450nm，3）藍光470nm或冷白光，4）暖白光，5）綠光540nm，6）黃橙光590nm，7）紅光640nm，8）遠紅光730nm。

技術(shù)指標：

• 藻類(lèi)同步培養通道：8個(gè)

• 培養管容量：100ml，建議大培養容量85ml

• 在線(xiàn)即時(shí)監測參數：分別監測每個(gè)培養管的OD680和OD720，數據自動(dòng)保存到主機內存中，PIN光電二極管檢測器，665－750nm帶通濾波器

• 精確控溫范圍：標準配置高于環(huán)境溫度5-10℃（與光強有關(guān)）~60℃，可選配15℃-60℃（環(huán)境溫度20℃，需加配制冷單元）

• 加熱系統：150W筒形加熱器

• 水浴體積：5L

• 水浴自動(dòng)補水模塊（選配）：水浴水位因蒸發(fā)降低后可自動(dòng)補水

• 光源系統：全LED光源，可在0-100%范圍內調控，每個(gè)通道的光強可分別獨立調控

• MC 1000-OD：標配冷白光LED，可選配暖白光、紅光（635nm）或藍光（470nm）LED；光強0-1000μmol/m²/s可調， 可升級至0-2500μmol/m²/s

• MC 1000-OD-WW：標配暖白光LED，光強0-1000μmol/m²/s可調，更高光強可定制

• MC 1000-OD-MULTI：8個(gè)通道光源顏色不同，分別為紫光405nm，藍紫光450nm，藍光470nm或冷白光，暖白光，綠光540nm，黃橙光590nm，紅光640nm，遠紅光730nm；光強0-1000μmol/m²/s可調

• MC 1000-OD-MIX：每個(gè)通道可配備多8種不同顏色的LED光源，光源顏色可由用戶(hù)定制，大光強可達2500μmol/m²/s

• 控光模式：可靜態(tài)或動(dòng)態(tài)設置光照程序，如正弦、晝夜節律、脈沖等

• 控制單元顯示屏：可調控培養程序和顯示數據

• 氣流調控：通過(guò)多管調節閥對8個(gè)培養管手動(dòng)獨立調控氣體流量

• OD測量程序：將主機內存中的OD數據下載到電腦中并以圖表形式顯示，數據可導出為T(mén)XT或Excel文件

• 

• MC實(shí)時(shí)在線(xiàn)監測分析模塊（含工作站和軟件基礎版或高級版，選配）

• 同時(shí)控制2臺MC1000（基礎版）或無(wú)限臺MC1000（高級版）

• 通過(guò)PBR軟件動(dòng)態(tài)調控光照和溫度模式

• 通過(guò)光密度（OD680、OD720）變化實(shí)時(shí)監測藻類(lèi)生物量

• 對生長(cháng)速率進(jìn)行實(shí)時(shí)回歸分析

• 多數據管理功能（過(guò)濾、查找、多重導出）

• 可將測量數據、培養程序和其他信息保存到數據庫中

• 通過(guò)GUI圖形用戶(hù)界面設置培養程序并在線(xiàn)顯示測量數據圖

• 數據可導出為CSV、Excel或XML文件

• 支持GMS高精度氣體混合系統（僅限高級版）

• 用戶(hù)自編程培養程序（僅限高級版）

• 設定實(shí)驗起始時(shí)間（僅限高級版）

• 電子郵件通知（僅限高級版）

• GMS150高精度氣體混合系統（選配）：可控制氣體流速和成分，標配為控制氮氣/空氣和二氧化碳，氣源需用戶(hù)自備

• 恒濁控制模塊（選配）：帶有8個(gè)控制閥，可獨立控制8個(gè)培養管的濁度，由軟件自動(dòng)控制

• O₂/CO₂監測系統（選配）：8通道續批式監測藻類(lèi)CO₂吸收或光合放氧通量：

• 氧氣分析測量：氧氣測量范圍0－100％，分辨率0.0001%，精確度優(yōu)于0.1％，溫度、壓力補償,數碼過(guò)濾（噪音）0-50秒可調，具兩行文字數字LCD背光顯示屏，可同時(shí)顯示氧氣含量和氣壓

• 二氧化碳分析測量：雙波長(cháng)非色散紅外技術(shù)，測量范圍0－5％或0－15％兩級選擇（雙程），分辨率優(yōu)于0.0001%或1ppm（可達0.1ppm），精確度1%，通過(guò)軟件溫度補償，具兩行文字數字LCD背光顯示屏，可同時(shí)顯示CO2含量和氣壓，具數碼過(guò)濾（噪音）功能

• 氣體抽樣與氣路切換：具備隔膜泵、氣流控制針閥和精密流量計，氣路自動(dòng)定時(shí)切換功能

• 藻類(lèi)熒光測量模塊（選配）：用于測量藻類(lèi)熒光參數以反映藻類(lèi)生理狀態(tài)及濃度，熒光測量程序包括Ft，QY，OJIP-test，NPQ、光響應曲線(xiàn)等，可選配探頭式測量或試管式測量：

• 探頭式測量：具備光纖測量探頭，可插入培養液中原位測量藻類(lèi)熒光參數

• 試管式測量：具備測量杯，可取樣精確測量藻類(lèi)熒光參數及光密度值

• 通訊方式：USB

• 尺寸：71×33×21 cm

• 重量：13kg

• 供電：110-240V

應用案例：

不同CO₂濃度下衣藻Chlamydomonas的生長(cháng)曲線(xiàn)（Zhang，2014）

聚球藻Synechococcus野生型和△nblA的生長(cháng)曲線(xiàn)（Yu，2015）

產(chǎn)地：捷克

參考文獻：

1.  Barera S, et al. 2021. Effect of lhcsr gene dosage on oxidative stress and light use efficiency by Chlamydomonas reinhardtii cultures. Journal of Biotechnology 328: 0168-1656.

2.  Pivato M, et al. 2021. Heterologous expression of cyanobacterial Orange Carotenoid Protein (OCP2) as a soluble carrier of ketocarotenoids in Chlamydomonas reinhardtii. Algal Research 55(16):102255.

3.  Gachelin M, et al. 2021. Enhancing PUFA-rich polar lipids in Tisochrysis lutea using adaptive laboratory evolution (ALE) with oscillating thermal stress. Applied Microbiology and Biotechnology 105: 301-312.

4.  Chen H, et al. 2021. A Novel Mode of Photoprotection Mediated by a Cysteine Residue in the Chlorophyll Protein IsiA. mBio 12(1).

5.  Cecchin M, et al. 2021. CO₂ supply modulates lipid remodelling, photosynthetic and respiratory activities in Chlorella species 18(2): 431842.

6.  Dixit RB, et al. 2021. Secretomics: A Possible Biochemical Foot Printing Tool in Developing Microalgal C*tion Strategies. doi: 10.21203/rs.3.rs-163118/v1

7.  Kareya MS, et al. 2020. Photosynthetic Carbon Partitioning and Metabolic Regulation in Response to Very-Low and High CO₂ in Microchloropsis gaditana NIES 2587. Frontiers in Plant Science 11: 981.

8.  Billey E, et al. 2021. Characterization of the Bubblegum acyl-CoA synthetase of Microchloropsis gaditana. Plant Physiology 185(3): 815-835.

9.  Vonshak A, et al. 2020. Photosynthetic characterization of two Nannochloropsis species and its relevance to outdoor c*tion. Journal of Applied Phycology 32(2):909-922.

10. Dienst D, et al. (2020). High density c*tion for efficient sesquiterpenoid biosynthesis in Synechocystis sp. PCC 6803. Scientific Reports 10(1): 5932.

11. Weiner I, et al. 2020. CSO -A sequence optimization software for engineering chloroplast expression in Chlamydomonas reinhardtii. Algal Research 46: 101788.

12. Akma C, et al. 2020. Two-phase method of c*ting Coelastrella species for increased production of lipids and carotenoids. Bioresource Technology Reports 9: 100366.

13. Cecchin M, et al. 2020. Improved lipid productivity in Nannochloropsis gaditana in nitrogen-replete conditions by selection of pale green mutants. Biotechnology for Biofuels 13(1): 78.

14. Alvarenga D, et al. 2020. AcnSP – A Novel Small Protein Regulator of Aconitase Activity in the Cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803. Frontiers in Microbiology 11: 1445.

15. Zhang B, et al. 2020. The carbonate concentration mechanism of Pyropia yezoensis (Rhodophyta): evidence from transcriptomics and biochemical data. BMC Plant Biology 20(1): 424.

16. Nzayisenga, JC, et al. 2020. Effects of light intensity on growth and lipid production in microalgae grown in wastewater. Biotechnology for Biofuels 13(284): 1179-1184.

17. Cecchin M, et al. 2020. Improved lipid productivity in Nannochloropsis gaditana in nitrogen-replete conditions by selection of pale green mutants. Biotechnology for Biofuels 13(6): 312.

18. Flamholz AI, et al. 2020. Functional reconstitution of a bacterial CO₂ concentrating mechanism in Escherichia coli. eLife 9: e59882.

19. Gupta JK, et al. 2020. Overexpression of bicarbonate transporters in the marine cyanobacterium Synechococcus sp. PCC 7002 increases growth rate and glycogen accumulation. Biotechnology for Biofuels 13: 17.

20. Valev D, et al. 2020. Testing the Potential of Regulatory Sigma Factor Mutants for Wastewater Purification or Bioreactor Run in High Light. Current Microbiology 77(8) : 1590-1599.

21. Yao L, et al.. 2020. Pooled CRISPRi screening of the cyanobacterium Synechocystis sp PCC 6803 for enhanced industrial phenotypes. Nature Communications 11(1): 1666.

22. Shrameeta S, et al. 2020. Glycogen Metabolism Supports Photosynthesis Start through the Oxidative Pentose Phosphate Pathway in Cyanobacteria1. Plant Physiology 182(1):507-517.

23.  Alessandra B, et al. 2020. Photosynthesis Regulation in Response to Fluctuating Light in the Secondary Endosymbiont Alga Nannochloropsis gaditana. Plant & Cell Physiology 61(1): 41-52..